г.Екатеринбург, ул. Машинная, 1
Где сдать анализы

Исследование причин сепсиса у животных

Исследование причин сепсиса у животных

Ключевой анализ - микробиологическое исследование крови с определением чувствительности к антибактериальным препаратам

Сепсис является одной из наиболее важных причин заболеваемости и смертности в медицине человека и связан с высокой смертностью собак и кошек. Распространенность и заболеваемость сепсисом в ветеринарной медицине недостаточно документированы. Имеющиеся данные показывают, что у собак смертность, связанная с септическим перитонитом, колеблется от 21 до 68%. Другие отчеты указывают на 70% смертность собак с полиорганной недостаточностью. У кошек с сепсисом документально подтверждена смертность в 40%. На основании этих и других результатов представляется вероятным, что сепсис является основной причиной смертности госпитализированных собак и кошек.
  • Сепсис является серьезной проблемой у кошек, которая связана с септическим перитонитом, абсцессом печени, пиотораксом, бактериемией, пневмонией, эндокардитом, пиелонефритом и пиометрой. Хотя бактериальный перикардит у кошек встречается редко, он вызывается распространением бактерий из одонтогенных источников, при пневмонии, абсцессах, перитоните, пиометры.
  • Сепсис определяется как опасная для жизни дисфункция органов, вызванная нарушением регуляции реакции хозяина на инфекцию. Этиологией этого процесса могут служить бактерии, грибы или вирусы. Септический шок определяется как разновидность сепсиса, при которой особенно глубокие циркуляторные, клеточные и метаболические нарушения связаны с более высоким риском смерти.

До 2016 года сепсис клинически распознавался по наличию или подозрению на инфекцию вместе с наличием не менее 2 из 4 критериев синдрома системного воспалительного ответа (SIRS) (см. Таблица 1). Критерии SIRS могут быть вторичными по множеству причин, и инфекция является лишь одной из них.

Критерии SIRS у собак и кошек были получены из когорты хирургических пациентов и небольшого патологоанатомического исследования и могут не быть репрезентативными для всех мелких животных с сепсисом. Тем не менее, наличие SIRS у собак и кошек должно повысить у практикующего врача подозрения на наличие сепсиса; тем не менее, если у пациента наблюдается клиническое ухудшение, но он не соответствует необходимому количеству критериев SIRS, сепсис все равно следует рассматривать как дифференциальный диагноз.

Таблица 1. Критерии синдрома системной воспалительной реакции (SIRS) у собак, кошек и людей.

Показатель

Собаки (требуется 2/4)

Кошки (требуется 3/4)

Люди (требуется 2/4)

Температура тела ˚C

<38,1 или >39,2

<37,7 или >40,0

<36,0 или >38,0

Частота сердечных сокращений (уд/мин)

>120

<140 или >225

>90

Частота дыхания (вдох/мин)

>20

>40

>20

Лейкоциты (*10^9/л)

<6 или >16; >3%

<5 или >19

<4 или >12; 10%

Сепсис развивается, когда иммунный ответ на инфекцию становится генерализованным и вовлекает нормальные ткани, удаленные от места повреждения или инфекции. Он характеризуется системной нерегулируемой реакцией хозяина на инфекцию, при которой одновременно наблюдаются гипервоспалительные и гиповоспалительные состояния, обусловленные дисфункцией как врожденного, так и адаптивного иммунитета. Ранняя гипервоспалительная фаза, в которой прогрессирует цитокиновый шторм, сопровождается синдромом компенсаторной противовоспалительной реакции для ограничения повреждения тканей. В поздней фазе сепсиса и при септическом шоке наблюдаются многочисленные гемодинамические, микроциркуляторные, клеточные и метаболические нарушения, которые вызывают повышенную смертность у пациентов.

 

Раннее назначение адекватной антибактериальной терапии - имеет решающее значение для выживания при сепсисе!

Вопрос - ответ

В какие транспортные системы берется кровь на посев?

Необходимо определиться с используемым комплектом флаконов.

 

Для получения адекватных результатов исследования необходимо соблюдать следующие правила:

  • Желательно получать пробы крови перед началом подъема температуры.
  • Кровь забирается до начала антибактериального лечения или перед очередным введением препарата (во время наименьшей концентрации антибиотика в интервале дозирования).
  • Не следует брать кровь из сосудистых катетеров, кроме случаев, когда предполагается катетер-ассоциированная инфекция кровотока.
  • Объем собранной крови является наиболее важным для получения достоверного результата. Использование меньшего объема образца может исказить результаты выделения и/или увеличить время обнаружения некоторых микроорганизмов.
  • Рекомендованы 2-3-кратные исследования с интервалом 30–60 минут, что увеличивает процент положительных результатов исследований.
  • Флаконы должны быть комнатной температуры. Перед взятием крови необходимо промаркировать флаконы.

Как правильно брать кровь на посев?

1. С крышки флакона удалить пластиковую защитную пластину и продезинфицировать пробку 70% спиртом. Дождаться полного высыхания.
2. Выстричь шерсть над выбранным для пункции сосудом, участок кожи продезинфицировать 70% спиртом. Дождаться, пока высохнет обработанный участок кожи. Не допускается пальпировать сосуд после обработки кожи перед введением иглы.
3. Пробы крови получают венепункцией периферических вен одноразовым шприцем или с использованием системы забора крови с соблюдением правил асептики. При использовании шприца необходимо поменять иглу перед внесением биоматериала во флаконы.
4. Внесение биоматериала во флаконы:
При использовании системы из 2х флаконов сначала нужно вносить образец во флакон для выделения анаэробных микроорганизмов (синяя крышка), а затем - во флакон для выделения аэробных микроорганизмов (зеленая/красная крышка).
При использовании системы из 1-го флакона внести весь образец в аэробный флакон (зеленая/красная крышка).

Для оценки количества внесенного образца используются метки объема на этикетке флакона.
5. После внесения крови во флакон, осторожно, не отрывая дно флакона от поверхности стола, вращательным движением перемешать его содержимое для предотвращения свертывания крови.

Как хранить и транспортировать инокулированные флаконы?

  • Температура хранения и транспортировки +20…+25, общее время хранения и транспортировки не более 6 часов с момента взятия материала. Не хранить в холодильнике! Не хранить в термостате!
  • Так как кровь часто забирается у животных в критическом состоянии, допустимо сразу после взятия крови вызвать курьера лаборатории.

Какие биоматериалы, кроме крови, можно забрать на исследование при сепсисе?

Микробиологическое исследование источника бактериемии рекомендуется:

  • при пневмонии - отделяемое НДП (мокрота, БАЛ и др.),
  • при пиелонефрите - моча (цистоцентез),
  • при интраабдоминальной или раневой инфекции - посев раневого отделяемого,
  • при менингите - посев ликвора.

Что нужно знать при интерпретации результатов посева крови:

Как отличить контаминант от истинного патогена?

На протяжении многих лет ряд исследований помог нам получить информацию о том, какие микроорганизмы с наибольшей вероятностью представляют контаминацию при выделении из крови. К ним относятся большинство видов коагулазонегативных стафилококков (CoNS), большинство видов Corynebacterium и родственных родов, Bacillus spp., кроме Bacillus anthracis, Micrococcus spp. и Cutibacterium acnes и родственные виды. Эти микроорганизмы могут считаться контаминантами, если они выделены в одном флаконе из нескольких гемокультур, полученных последовательно, и в этом случае для определения значимости (или ее отсутствия) требуется тщательная оценка пациентов и дополнительная лабораторная информация. Энтерококки, стрептококки группы viridans (кроме случаев эндокардита) и Clostridium spp. имеют различную клиническую значимость (т. е. могут быть либо контаминантами, либо истинными патогенами) при росте из культур крови.

Напротив, микроорганизмы, такие как Staphylococcus aureus, Streptococcus pneumoniae, бета-гемолитические стрептококки, Listeria monocytogenes, Escherichia coli и другие представители Enterobacterales, Pseudomonas aeruginosa, Neisseria meningitidis, Haemophilus influenzae, анаэробные грамотрицательные палочки (например, Bacteroides spp. и Fusobacterium spp.) и виды Candida редко представляют контаминацию = могут быть этиологически значимыми.

Критериями контаминации могут служить:

  • Вид микроорганизма (Streptococcus viridans group, кроме случаев эндокардита; CoNS – при наличии других признаков контаминации; Bacillus spp., кроме Bacillus anthracis (облигатный патоген), Bacillus cereus, Bacillus subtilis - при наличии других признаков контаминации; Corynebacterium spp., кроме C. jeikium)
  • Рост перечисленных микроорганизма (см.выше) в одном флаконе из 2-х и более
  • Замедленная скорость роста (кроме истинно медленнорастущих микроорганизмов)
  • Наличие бактериемии при отсутствии других критериев сепсиса 
Литература

Singer M, Deutschman CS, Seymour CW, Shankar-Hari M, Annane D, Bauer M, et al.. The Third International Consensus Definitions for Sepsis and Septic Shock (Sepsis-3). JAMA. (2016) 315:801–10. 10.1001/jama.2016.0287

A Guide to Utilization of the Microbiology Laboratory for Diagnosis of Infectious Diseases: 2018 Update by the Infectious Diseases Society of America and the American Society for Microbiology CID 2018:67

Surviving Sepsis Campaign: International Guidelines for Management of Sepsis and Septic Shock: 2016

Reller, L. B., P. R. Murray, and J. D. MacLowry. 1982. Cumitech 1A, Blood Cultures II. Coordinating ed., J. A. Washington II. American Society for Microbiology, Washington, D.C.

Новости
Всё для поиска возбудителя инфекции
Всё для поиска возбудителя инфекции

Обзор современных методов этиологической диагностики: масс-спектрометрия